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深入了解融合基因,引物設計及載體構(gòu)建案例詳解!

時間:2021-10-22 來源: 瀏覽:

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融合基因引物設計—根據(jù)參考文獻設計引物

PMID:19293179,IF:9.13,Cancer Res. 2009 Apr 01;69(7)

PMID:19293179,IF:9.13,Cancer Res. 2009 Apr 01;69(7)

PMID:19293179,IF:9.13,Cancer Res. 2009 Apr 01;69(7)

融合基因引物設計—根據(jù)目的蛋白序列設計引物

以結(jié)核分枝桿菌TB10.4-Hsp16.3為例,需設計兩對,四條引物,P1:TB10.4上游引物,P2:TB10.4下游重疊引物,P3:Hsp16.3上游重疊引物,P4:Hsp16.3下游引物

重疊PCR技術(shù):
重疊延伸PCR技術(shù)(gene splicing by overlap extension PCR,簡稱SOE PCR)由于采用具有互補末端的引物,使PCR產(chǎn)物形成了重疊鏈,從而在隨后的擴增反應中通過重疊鏈的延伸,將不同來源的擴增片段重疊拼接起來。
此技術(shù)利用PCR技術(shù)能夠在體外進行有效的基因重組,而且不需要內(nèi)切酶消化和連接酶處理。

引物設計與合成:                                         
根據(jù)Genbank報道的Mtb H37Rv株TB10.4和Hsp16.3基因序列設計如下引物:TB10.4上游引物(P1):GGATCC ATGTCGCAAATCATGTACAACT,TB10.4下游重疊引物 (P2):GCTTCCACCGCCACC GCCGCCCCATTTG;Hsp16.3上游重疊引物 (P3):GGTGGCGGTGGAAGC ATGGCCACCACC,Hsp16.3下游引物(P4):AAGCTT TCAGTTGGTGGACCGGATC。P1含BamH I 酶切位點,P2、P3含互補的接頭序列,P4含Hind III酶切位點。
融合基因PCR:
步驟一:擴增TB10.4及Hsp16.3以Mtb H37Rv基因組DNA為模板,分別以P1和P2、P3和P4為引物對,擴增TB10.4和Hsp16.3基因片段。
擴增條件為:94℃預變性5 min;94℃變性30s,60℃退火30s,72℃延伸30s,共32個循環(huán);72℃終止5 min?;厥占兓疶B10.4和Hsp16.3。

以重疊延伸PCR技術(shù)將兩者連接,此時擴增條件為:94℃預變性5 min;94℃變性30s,65℃退火30s,72℃延伸45s,共10個循環(huán);
72℃終止5 min;再加入引物P1、P4,擴增融合基因TB10.4-Hsp16.3,此時擴增條件為:94℃預變性5 min;94℃變性30s,56℃退火30s,72℃延伸45s,共32個循環(huán);72℃終止5min。

融合基因?qū)嶒灲Y(jié)果圖:
瓊脂糖凝膠電泳檢測PCR產(chǎn)物
圖一:
第一泳道:約300bp的TB10.4
第三泳道:約450bp的Hsp16.3
圖二:
第一泳道:約750b的TB10.4-Hsp16.3

融合基因?qū)嶒灲Y(jié)果圖:
DNA測序鑒定
部分測序結(jié)果,將測序結(jié)果與GeneBank中基因序列相比。以驗證融合基因序列正確性。

融合因載體構(gòu)建

載體名稱:pET-28a(+)
酶切位點:BamH I 、Hind III酶切
載體抗性:Kan(卡那霉素)

實驗步驟:
1、堿裂解法提取質(zhì)粒DNA
2、pMD-TB10.4-Hsp16.3和pET-28a(+)質(zhì)粒雙酶切
3、純化雙酶切的融合基因TB10.4-Hsp16.3和表達載體pET-28a(+)
4、取酶切的TB10.4-Hsp16.3 與pET-28a(+) 連接
5、轉(zhuǎn)化進E.coli DH5ɑ的感受態(tài)細胞

第一泳道:菌落PCR鑒定TB10.4-Hsp16.3
第二泳道:雙酶切后TB10.4-Hsp16.3及pET-28a(+)
第三泳道:未酶切pET-28a(+)
融合基因表達:
重組融合蛋白TB10.4-Hsp16.3的純化
實驗步驟:
1、制備E.coli BL21(DE3)感受態(tài)細胞
2、將重組質(zhì)粒轉(zhuǎn)化進感受態(tài)細胞
3、抗性篩選
4、挑取單菌落振蕩培養(yǎng)
5、IPTG誘導
6、SDS-PAGE分析

第一泳道:表達產(chǎn)物超聲后上清
第二泳道:表達產(chǎn)物超聲后沉淀
第三、四、五泳道:純化TB10.4-Hsp16.3(29kd)
融合基因免疫活性分析:
實驗步驟:
將純化的TB10.4-Hsp16.3進行12%SDS-PAGE分離;150mA恒流轉(zhuǎn)印2h,轉(zhuǎn)印后的NC膜用5%脫脂奶粉于4℃封閉過夜;分別加1:100稀釋的TB患者陽性混合血清和健康體檢者混合血清,37℃作用2h,PBST洗膜5次;加1:3000稀釋的HRP標記羊抗人IgG,37℃作用2h,PBST洗膜6次;以增強型ECL化學發(fā)光檢測結(jié)果。

融合基因抗體制備:

融合基因抗體制備實驗步驟:
1、利用原核表達載體體外細菌大量表達融合蛋白,并利用Ni+-NTA柱純化蛋白,Western-blot法鑒定后Balb/c小鼠體內(nèi)注射免疫小鼠。
2、免疫后的小鼠脾臟在無菌條件下破碎,將B細胞懸浮在沒有血清的培養(yǎng)液中,并洗滌3次去掉小鼠的血清。
SP2/0細胞是用加有10%胎?;蛐∨Q迮囵B(yǎng)的,每天更換新鮮培養(yǎng)液使成為對數(shù)分裂期生長旺盛的細胞。
細胞用RPMIl640洗滌2—3次,把兩種細胞合并在同一試管中,用50%的聚乙二醇(相對分子質(zhì)量為1000—1500)作為融合劑,在37℃條件下融合l-2min。然后用1640培養(yǎng)液緩慢稀釋,然后除去PEG,將細胞分散至HAT選擇培養(yǎng)板中。
3、陽性雜交瘤細胞的篩選與單克隆化:雜交細胞經(jīng)約10-14d培養(yǎng)后,形成可用的細胞集落(克隆)。經(jīng)過幾次更換培養(yǎng)液(HT培養(yǎng)液)后進行抗體活性檢測。產(chǎn)生特異性抗體的單克隆雜交瘤細胞株即擴大培養(yǎng),以獲得足夠的細胞用于保存和制備可供應用的抗體。
4、抗體需純化及western blot法鑒定。

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