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Cell | 清華大學(xué)劉俊杰/王家揭示逆轉(zhuǎn)座子在基因組上跳躍的分子機制

時間:2023-06-10 來源: 瀏覽:

Cell | 清華大學(xué)劉俊杰/王家揭示逆轉(zhuǎn)座子在基因組上跳躍的分子機制

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逆轉(zhuǎn)錄元件是廣泛存在的跳躍元件,被認(rèn)為是基因組進化的主要驅(qū)動力,也可以被重新利用為基因編輯工具。

2023年6月9日,清華大學(xué)劉俊杰和王家共同通訊在 Cell  在線發(fā)表題為“ Structural RNA components supervise the sequential DNA cleavage in R2 retrotransposon ”的研究論文,該研究確定了具有核糖體DNA靶RNA和調(diào)控RNA的真核R2逆轉(zhuǎn)座子的冷凍電鏡結(jié)構(gòu)。 結(jié)合生化和測序分析,該研究揭示了識別和切割所必需的兩個DNA區(qū)域,Drr和Dcr。

3’調(diào)控RNA與R2蛋白的結(jié)合加速了第一鏈的切割,阻斷了第二鏈的切割,并開始了從3’尾部開始的逆轉(zhuǎn)錄。通過逆轉(zhuǎn)錄去除3 ’調(diào)控RNA允許5 ’調(diào)控RNA結(jié)合并啟動第二鏈切割。 綜上所述,該研究工作解釋了DNA識別和RNA監(jiān)督的序列逆轉(zhuǎn)錄轉(zhuǎn)座子R2機制,為逆轉(zhuǎn)座子和應(yīng)用重編程提供了見解。

逆轉(zhuǎn)座子是一類可以通過“復(fù)制-粘貼”的方式在基因組上發(fā)生跳躍的DNA元件。 R2是低等真核生物中廣泛存在的一種逆轉(zhuǎn)座子。它們專一性地“寄生”在宿主基因組的28S核糖體DNA中,借助宿主基因的啟動子,合成自身的mRNA和蛋白質(zhì)并組裝形成R2復(fù)合物(“復(fù)制”過程);R2復(fù)合物可再次識別宿主28S核糖體DNA上的專一性位點,通過核酸酶(Endonuclease, EN)結(jié)構(gòu)域切開DNA雙鏈,再通過逆轉(zhuǎn)錄酶(Reverse transcriptase, RT)結(jié)構(gòu)域逆轉(zhuǎn)錄合成cDNA,將R2基因序列重新整合到宿主基因組上(“粘貼”過程),完成“增殖”。

有趣的是,逆轉(zhuǎn)座子等可移動的DNA元件在基因組上跳躍的過程中,極大地豐富了基因組的組成,被認(rèn)為在基因組進化的過程中扮演著重要的作用。 因此,理解逆轉(zhuǎn)座子在基因組上跳躍的分子機制將有助于思考“我們的基因組從哪里來、如何來”的問題。 此外,利用逆轉(zhuǎn)座子在基因組上跳躍的性質(zhì),開發(fā)新的核酸操縱工具,將具有巨大的應(yīng)用前景Science , 2023)。

圖1. 逆轉(zhuǎn)座子在基因組上跳躍的示意圖

研究團隊發(fā)現(xiàn), 位于R2 mRNA 3’端非翻譯區(qū)的RNA(3’-RNA)在R2蛋白質(zhì)切割DNA雙鏈的過程中,表現(xiàn)出促進第一條鏈切割、抑制第二條鏈切割的作用 ;位于5’端翻譯區(qū)的RNA(5’-RNA)則表現(xiàn)出降低第一條鏈切割、激活第二條鏈切割的作用;而當(dāng)5’-RNA與3’-RNA同時存在時,總是表現(xiàn)出3’-RNA的調(diào)控作用,并且完全抑制第二條鏈的切割。 為了進一步理解其中的分子機制,研究團隊解析了R2逆轉(zhuǎn)座子在3’-RNA結(jié)合狀態(tài)和5’-RNA結(jié)合狀態(tài)的高分辨結(jié)構(gòu)。 在3’-RNA結(jié)合狀態(tài)中,DNA底物被蛋白質(zhì)特異性識別,3’-RNA核心區(qū)域結(jié)合在RNA結(jié)合(RNA binding, RB)結(jié)構(gòu)域上。在5’-RNA結(jié)合狀態(tài)中,5’-RNA呈現(xiàn)出復(fù)雜的“三爪(three-claw)”結(jié)構(gòu),緊密的包裹住蛋白質(zhì)核心。 值得注意的是,5’-RNA的其中一個爪(Claw3)同樣結(jié)合在RB結(jié)構(gòu)域上,且生化分析表明,Claw3對激活第二條鏈切割是必要的。

圖2. 3’-RNA結(jié)合狀態(tài)(左)和5’-RNA結(jié)合狀態(tài)(右)的復(fù)合物結(jié)構(gòu)

此外,研究團隊用一段連接序列將5’-RNA與3’-RNA連接成一條RNA,設(shè)計了R2全長mRNA的模擬物(L-RNA),并獲得了R2逆轉(zhuǎn)座子在L-RNA結(jié)合狀態(tài)的結(jié)構(gòu)。 在這個結(jié)構(gòu)中,5’-RNA同樣以“三爪”的形式與蛋白質(zhì)核心緊密結(jié)合,但由于3’-RNA的擠占,起激活第二條鏈切割作用的Claw3未能與RB結(jié)構(gòu)域結(jié)合。研究團隊發(fā)現(xiàn), L-RNA中3’-RNA與蛋白質(zhì)RB結(jié)構(gòu)域的結(jié)合將抑制第二條鏈的切割,但當(dāng)提供dNTP作為原料,使逆轉(zhuǎn)錄可以發(fā)生后,3’-RNA在作為逆轉(zhuǎn)錄模板的過程中逐漸從RB結(jié)構(gòu)域上解離下來,5’-RNA得以與RB結(jié)構(gòu)域結(jié)合,從而激活第二條鏈的切割。

圖3. L-RNA結(jié)合狀態(tài)的復(fù)合物結(jié)構(gòu)與RNA監(jiān)督DNA雙鏈順序性切割的示意圖

綜合以上分析,研究團隊總結(jié)得出了R2逆轉(zhuǎn)座子在基因組上跳躍的分子機制:R2蛋白質(zhì)特異性識別28S核糖體DNA序列后,蛋白質(zhì)RB結(jié)構(gòu)域首先結(jié)合R2 mRNA上的3’-RNA,促進第一條DNA鏈的切割,同時抑制第二條鏈的切割,僅暴露出第一條鏈的3’-OH作為引物,從mRNA的3’端起始逆轉(zhuǎn)錄過程(Targte primed reverse transcription, TPRT),隨著逆轉(zhuǎn)錄的進行,位于mRNA 3’端的3’-RNA逐漸從蛋白質(zhì)RB結(jié)構(gòu)域解離,對第二條鏈切割的抑制作用得以釋放,R2 mRNA上的5’-RNA與RB結(jié)構(gòu)域的結(jié)合進一步激活了第二條鏈的切割。由此,位于mRNA兩端的結(jié)構(gòu)性RNA共同監(jiān)督了DNA雙鏈切割的順序性切割。 這種嚴(yán)密的順序性切割保障了依賴宿主基因表達元件的R2逆轉(zhuǎn)座子進行“有效的增殖”,在28S核糖體DNA中不斷產(chǎn)生有活性的拷貝。

圖4. R2逆轉(zhuǎn)座子在基因組上發(fā)生跳躍的分子機制與意義

有趣的是,研究團隊將低等真核生物的R2逆轉(zhuǎn)座子與其祖先(原核生物第二類內(nèi)含子,Group II intron)和哺乳動物中的LINE-1逆轉(zhuǎn)座子進行了比較,發(fā)現(xiàn)在Group II intron向R2逆轉(zhuǎn)座子及進一步向LINE-1逆轉(zhuǎn)座子進化的過程中,RNA的結(jié)構(gòu)性組分逐漸減少并被編碼區(qū)域所取代,并且催化功能逐漸從以RNA為主導(dǎo)過渡到以蛋白質(zhì)為主導(dǎo),為理解生物大分子進化提供了新的視角。此外,LINE-1在哺乳動物基因組中廣泛存在且具有逆轉(zhuǎn)座活性,為基因組提供進化驅(qū)動力的同時,也為基因組穩(wěn)定性和基因表達帶來了重大的影響。 對R2逆轉(zhuǎn)座子在基因組上跳躍的分子機制的研究,將啟發(fā)我們思考LINE-1逆轉(zhuǎn)座子這類“自私的基因”與基因組之間精彩的博弈過程。

圖5. 逆轉(zhuǎn)座子中RNA與蛋白質(zhì)共進化趨勢的示意圖

清華大學(xué)生命學(xué)院劉俊杰助理教授和王家副研究員為該文共同通訊作者;清華大學(xué)生命學(xué)院博士后鄧譜涓和博士生譚順青為該文共同第一作者。此外,該項研究工作得到了中國科學(xué)院動物研究所王皓毅研究員、清華大學(xué)生命學(xué)院張強鋒副教授、吝易助理教授等合作者的大力支持。美國Broad研究所張鋒教授和Max E. Wilkinson博士在原子模型搭建中提供了寶貴的建議。

清華大學(xué)劉俊杰團隊長期關(guān)注DNA和RNA核酸酶研究及相關(guān)核酸操縱工具的開發(fā)和應(yīng)用。綜合運用生物信息學(xué)、結(jié)構(gòu)生物學(xué)、生物化學(xué)和細(xì)胞生物學(xué)手段,劉俊杰團隊及合作者已鑒定并開發(fā)了多種新型基因編輯工具( Nature , 2019; Mol. Cell , 2022; Cell Res ., 2023),歡迎對基因編輯或RNA生物學(xué)感興趣,尤其是有細(xì)胞生物學(xué)或生物信息學(xué)等學(xué)科背景的同學(xué)加入劉俊杰團隊。

實驗室網(wǎng)頁

http://gogolab.life.tsinghua.edu.cn

參考文章:
Wilkinson, M.E., Frangieh, C.J., Macrae, R.K., and Zhang, F. (2023). Structure of the R2 non-LTR retrotransposon initiating target-primed reverse transcription. Science 380, 301-308.
Liu, J.J., Orlova, N., Oakes, B.L., Ma, E., Spinner, H.B., Baney, K.L., Chuck, J., Tan, D., Knott, G.J., Harrington, L.B., Basem, A.S., Wagner, A., Brotzmann, J., Staahl, B.T., Taylor, K.L., Desmarais, J., Nogales, E., and Doudna, J.A. (2019). CasX enzymes comprise a distinct family of RNA-guided genome editors. Nature 566, 218-223.
Tsuchida, C.A., Zhang, S., Doost, M.S., Zhao, Y., Wang, J., O’Brien, E., Fang, H., Li, C.P., Li, D., Hai, Z.Y., Chuck, J., Brotzmann, J., Vartoumian, A., Burstein, D., Chen, X.W., Nogales, E., Doudna, J.A., and Liu, J.J.G. (2022). Chimeric CRISPR-CasX enzymes and guide RNAs for improved genome editing activity. Molecular Cell 82, 1199-1209. e1196.
Sun, A., Li, C.P., Chen, Z., Zhang, S., Li, D.Y., Yang, Y., Li, L.Q., Zhao, Y., Wang, K., Li, Z., Liu, J., Liu, S., Wang, J., and Liu, J.J.G. (2023). The compact Casπ (Cas12l) ’bracelet’ provides a unique structural platform for DNA manipulation. Cell Research 33, 229-244.

參考消息:

https://www.cell.com/cell/fulltext/S0092-8674(23)00584-6#%20

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